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考馬斯亮藍快速染色液(8分鐘)

  • 產品貨號：CS-01F98145
  • 產品價格：電議
  • 產品產地：國產
  • 包裝類型:盒裝
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  • 含量：8mL（125×）
  • 品牌名稱:莼試
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簡介內容：考馬斯亮藍快速染色液(8分鐘)現貨供應，價格實惠。

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標簽:考馬斯亮藍快速染色液(8分鐘) 8mL（125×） 

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考馬斯亮藍快速染色液(8分鐘)

Commassie blue fast stain solution (8 mins)

8mL（125×）

CS-01F98145

實驗室常使用考馬斯亮藍染色法對凝膠上分離的蛋白進行染色，它既克服了氨基黑染色靈敏度不高的限制，又比銀染簡便易操作。目前廣泛用的考馬斯亮藍有G250和R250兩種。其中考馬斯亮藍G250由于與蛋白質的結合反應十分迅速，常用于蛋白質含量的測定?？捡R斯亮藍R250與蛋白質反應雖然比較緩慢，但是可以被洗脫下去，所以可以用來對電泳條帶染色。

本品是基于考馬斯亮藍染色法對蛋白質進行染色而設計的，與傳統染色液相比，本品為新型PAGE膠染色試劑，不含甲醇，醋酸等有毒或有刺激性物質，其獨特配方使得表面活性劑剝離，蛋白固定，蛋白染色，非蛋白區域著色屏蔽等功能同時進行。8-10分鐘即可完成page膠上蛋白染色，無需脫色。染色分辨率與傳統染色方法分辨率相當。染色的蛋白帶或蛋白點可進行高效電洗脫，適用于蛋白質譜分析。

儲存條件：室溫，有效期一年。

注意事項

1）為了您的安全和健康，請穿實驗服并帶一次性手套操作。

2）用本產品4分鐘即可顯示出蛋白條帶，加長染色時間和增加染色次數，有利于提高染色靈敏度。

3）如果凝膠面積增大或者厚度增加，增加染色液和染色時間。
4）切忌長時間高功率加熱，否則會使溶液連續沸騰蒸發，造成凝膠干裂。如果不慎使凝膠干裂，可加入 50ml去離子水，高火加熱1min，低火加熱3-5min，可一定程度恢復干裂的PAGE膠，但染色效果有一定毀壞。
實驗步驟：
(1)實驗開始前將RNA提取液于65℃水浴鍋中預熱,離心管中加入ME(巰基乙醇),(10mL加80ul,50mL中加入300ul)
(2)取約0.8g菌絲體(液體培養獲得的菌絲用真空抽濾即可！固體培養就更好說了),在液氮中迅速磨成精細粉末,裝入50mL離心管,按1g材料8mL的量加入預熱的RNA提取液,顛倒混勻  
(3)65℃水浴3-10 min,期間混勻2-3次
(4)加入等體積的酚(注意是酸酚pH4.5)::異戊醇(25:24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)
(5)取上清,等體積的:異戊醇(24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)
(6)加入1/4V體積10M LiCl溶液,4℃放置6h以上(或過夜)
(7)10,000rpm,4℃離心20min
(8)棄上清,用500ul SSTE溶解沉淀
(9)酚::異戊醇(25:24:1)抽提兩次,:異戊醇(24:1)抽提1次(10,000rpm,4℃,5min)
(10)加2V體積的無水乙醇,在-70℃冰箱沉淀30min以上
(11)12,000rpm,4℃離心20 min
(12)棄上清.沉淀用70%酒精漂洗一次,干燥
(13)加200ul的DEPC處理水溶解
(14)用非變性瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計掃描檢測RNA的質量
(在抽提過程中,若蛋白質含量或其它的雜質還較多,可以增加抽提次數)
操作步驟:
1. 勻漿處理:a.組織 將組織在液氮中磨碎,每50-100mg組織加入1ml TRIzol,用勻漿儀進行勻漿處理。樣品體積不應超過TRIzol體積10℅。
b.單層培養細胞 直接在培養板中加入TRIzol裂解細胞，每10cm2面積(即3.5cm直徑的培養板)加1ml，用移液器吸打幾次。TRIzol的用量應根據培養板面積而定，不取決于細胞數。TRIzol加量不足可能導致提取的RNA有DNA污染。
c．細胞懸液 離心收集細胞，每5-10×106動物、植物、酵母細胞或1×107細菌細胞加入1ml TRIzol，反復吸打。加TRIzol之前不要洗滌細胞以免mRNA降解。一些酵母和細菌細胞需用勻漿儀處理。產品僅用于科研
2．將勻漿樣品在室溫（15-30℃）放置5分鐘，使核酸蛋白復合物完全分離。
3．可選步驟：如樣品中含有較多蛋白質，脂肪，多糖或胞外物質（肌肉，植物結節部分等）可于2-8℃10000×g離心10分鐘，取上清。離心得到的沉淀中包括細胞外膜，多糖，高分子量DNA，上清中含有RNA。處理脂肪組織時，上層有大量油脂應去除。取澄清的勻漿液進行下一步操作。
5. 每使用1ml TRIzol加入0.2ml，劇烈振蕩15秒，室溫放置3分鐘。
6. 2-8℃10000×g離心15分鐘。樣品分為三層：底層為黃色有機相，上層為無色水相和一個中間層。RNA主要在水相中，水相體積約為所用TRIzol試劑的60℅。
7. 把水相轉移到新管中，如要分離DNA和蛋白質可保留有機相，進一步操作見后。用異丙醇沉淀水相中的RNA。每使用1ml TRIzol加入0.5ml異丙醇，室溫放置10分鐘。
8. 2-8℃10000×g離心10分鐘，離心前看不出RNA沉淀，離心后在管側和管底出現膠狀沉淀。移去上清。

原創作者：上海莼試生物技術有限公司

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