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SYBR Green I(10000×)

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  • 含量:50μl|100μl|1ml
  • 品牌名稱:莼試
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簡介內容:SYBR Green I(10000×)現貨供應,價格實惠。

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SYBR Green I(10000×)

SYBR Green I(10000×)

50μl|100μl|1ml

CS-01F96888

采用瓊脂糖電泳檢測雙鏈DNA時,SYBR GreenⅠ是靈敏的熒光染料,當其結合到核酸上時,會產生很的熒光及高量子產額,DNA/SYBR GreenⅠ復合物的量子產額均為0.8。由于與核酸結合后能產生很的信號,背景極低,并且對核酸的親和力高,因此SYBR染料可在低濃度條件下使用。SYBR GreenⅠ的低檢出限:20pg DNA(254nm);60pg DNA(300nm紫外透射);此外,SYBR GreenⅠ還可以用于檢測寡核苷酸(12ng,300nm紫外透射),比EB靈敏20100倍。SYBR GreenⅠ用于電泳檢測DNA時,既可預染,也可電泳后再進行染色。SYBR GreenⅠ用于瓊脂糖電泳檢測DNA后,可直接將DNA轉移至膜上,進行后續核酸印跡雜交反應。此外,SYBR GreenⅠ與DNA的結合對多種常用的限制性內切酶活性無抑制作用,可直接進行消化或連接。

使用說明:

點染法:用于瓊脂糖凝膠電泳:取原液1μl加入TE緩沖液或滅菌雙蒸水1ml,再加入6×DNA Loading buffer上樣緩沖液1ml混勻,(此時溶液為1:2000稀釋,即為工作液)電泳時取12μl工作液和5μl電泳樣品混勻后靜置5min后直接上樣。

膠染法:常規配置瓊脂糖凝膠100ml,加熱至融化,待溫度將至5070℃(感覺不燙手)加入該原液10μl。待膠凝固后即可電泳,電泳結束后即可在紫外照射下觀察。

注意事項:

1.SYBR GreenⅠ應避光存放,原液保存于-20℃;建議分裝凍存,短期可以4℃保存。

2.膠染法靈敏度較高,須將商品化的DNA marker稀釋510倍后使用。

3.在預染色方法中,電泳時間不要過2小時,否則SYBR GreenⅠ會從DNA上分離出來,會產生彌散狀條帶。

4.在常規用酒精沉淀核酸的過程中,SYBR Green I可以全部從雙鏈核酸上去掉。

5.在紫外照射透視下,與雙鏈DNA接合的SYBR Green I呈現綠色熒光。如果膠中含有單鏈DNA則顏色為橘黃而不是綠色。

6.SYBR Green對玻璃和非聚丙烯材料具有一定親合力。建議在稀釋、貯存、染色等使用過程中用聚丙烯類容器。
儲存條件:-20℃避光保存,有效期12個月。

實驗步驟:
(1)實驗開始前將RNA提取液于65℃水浴鍋中預熱,離心管中加入ME(巰基乙醇),(10mL加80ul,50mL中加入300ul)
(2)取約0.8g菌絲體(液體培養獲得的菌絲用真空抽濾即可!固體培養就更好說了),在液氮中迅速磨成精細粉末,裝入50mL離心管,按1g材料8mL的量加入預熱的RNA提取液,顛倒混勻  
(3)65℃水浴3-10 min,期間混勻2-3次
(4)加入等體積的酚(注意是酸酚pH4.5)::異戊醇(25:24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)
(5)取上清,等體積的:異戊醇(24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)
(6)加入1/4V體積10M LiCl溶液,4℃放置6h以上(或過夜)
(7)10,000rpm,4℃離心20min
(8)棄上清,用500ul SSTE溶解沉淀
(9)酚::異戊醇(25:24:1)抽提兩次,:異戊醇(24:1)抽提1次(10,000rpm,4℃,5min)
(10)加2V體積的無水乙醇,在-70℃冰箱沉淀30min以上
(11)12,000rpm,4℃離心20 min
(12)棄上清.沉淀用70%酒精漂洗一次,干燥
(13)加200ul的DEPC處理水溶解
(14)用非變性瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計掃描檢測RNA的質量
(在抽提過程中,若蛋白質含量或其它的雜質還較多,可以增加抽提次數)
操作步驟:
1. 勻漿處理:a.組織 將組織在液氮中磨碎,每50-100mg組織加入1ml TRIzol,用勻漿儀進行勻漿處理。樣品體積不應超過TRIzol體積10℅。
b.單層培養細胞 直接在培養板中加入TRIzol裂解細胞,每10cm2面積(即3.5cm直徑的培養板)加1ml,用移液器吸打幾次。TRIzol的用量應根據培養板面積而定,不取決于細胞數。TRIzol加量不足可能導致提取的RNA有DNA污染。
c.細胞懸液 離心收集細胞,每5-10×106動物、植物、酵母細胞或1×107細菌細胞加入1ml TRIzol,反復吸打。加TRIzol之前不要洗滌細胞以免mRNA降解。一些酵母和細菌細胞需用勻漿儀處理。產品僅用于科研
2.將勻漿樣品在室溫(15-30℃)放置5分鐘,使核酸蛋白復合物完全分離。
3.可選步驟:如樣品中含有較多蛋白質,脂肪,多糖或胞外物質(肌肉,植物結節部分等)可于2-8℃10000×g離心10分鐘,取上清。離心得到的沉淀中包括細胞外膜,多糖,高分子量DNA,上清中含有RNA。處理脂肪組織時,上層有大量油脂應去除。取澄清的勻漿液進行下一步操作。
5. 每使用1ml TRIzol加入0.2ml,劇烈振蕩15秒,室溫放置3分鐘。
6. 2-8℃10000×g離心15分鐘。樣品分為三層:底層為黃色有機相,上層為無色水相和一個中間層。RNA主要在水相中,水相體積約為所用TRIzol試劑的60℅。
7. 把水相轉移到新管中,如要分離DNA和蛋白質可保留有機相,進一步操作見后。用異丙醇沉淀水相中的RNA。每使用1ml TRIzol加入0.5ml異丙醇,室溫放置10分鐘。
8. 2-8℃10000×g離心10分鐘,離心前看不出RNA沉淀,離心后在管側和管底出現膠狀沉淀。移去上清。

原創作者:上海莼試生物技術有限公司

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