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本產品是由6條帶狀雙鏈DNA條帶組成的DNA Marker，適用于瓊脂糖凝膠電泳中DNA條帶的分析。含有1×loading buffer，可根據實驗需要，直接取2-5μl電泳，使用方便，電泳圖像清晰。6條帶的大小和含量分別為100bp(50ng/5μl)，300bp(50ng/5μl)，500bp(50ng/μl)，700bp(100ng/5μl)，900bp(50ng/5μl)，1200bp(50ng/5μl)。該Marker適用于DNA片段大小的確定和對DNA含量的精確定量。

使用方法：

1. 取2-5μl本產品加入到瓊脂糖凝膠的加樣孔中就行電泳。

注：根據電泳梳子的厚度和寬度確定上樣量。每1mm×1mm(厚度×寬度)加樣孔上樣1μl；窄齒梳子(一般為1mm×2mm)上樣2μl；寬齒梳子(一般為1mm×5mm)上樣5μl。如果使用厚齒梳子或寬于5mm的梳子，可以適當調整上樣量。

2. 建議電泳條件：凝膠濃度為1.5-2.0％，凝膠長度5-7cm，電泳電壓4-10v/cm，電泳時間20-25分鐘。

3. 通過EB染色后紫外燈下觀察條帶。

注意事項：

1. 瓊脂糖的質量對DNA的電泳有很大影響，電泳時請盡量使用質量優等的瓊脂糖。

2. 請使用新鮮配制的電泳緩沖液和新鮮配制的瓊脂糖凝膠進行電泳，以保證Marker良好的分離效果。
儲存條件：-20℃，有效期1年。

實驗步驟：

(1)實驗開始前將RNA提取液于65℃水浴鍋中預熱,離心管中加入ME(巰基乙醇),(10mL加80ul,50mL中加入300ul)

(2)取約0.8g菌絲體(液體培養獲得的菌絲用真空抽濾即可！固體培養就更好說了),在液氮中迅速磨成精細粉末,裝入50mL離心管,按1g材料8mL的量加入預熱的RNA提取液,顛倒混勻

(3)65℃水浴3-10 min,期間混勻2-3次

(4)加入等體積的酚(注意是酸酚pH4.5)::異戊醇(25:24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)

(5)取上清,等體積的:異戊醇(24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)

(6)加入1/4V體積10M LiCl溶液,4℃放置6h以上(或過夜)

(7)10,000rpm,4℃離心20min

(8)棄上清,用500ul SSTE溶解沉淀

(9)酚::異戊醇(25:24:1)抽提兩次,:異戊醇(24:1)抽提1次(10,000rpm,4℃,5min)

(10)加2V體積的無水乙醇,在-70℃冰箱沉淀30min以上

(11)12,000rpm,4℃離心20 min

(12)棄上清.沉淀用70%酒精漂洗一次,干燥

(13)加200ul的DEPC處理水溶解

(14)用非變性瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計掃描檢測RNA的質量

(在抽提過程中,若蛋白質含量或其它的雜質還較多,可以增加抽提次數)

操作步驟:

1. 勻漿處理:a.組織將組織在液氮中磨碎,每50-100mg組織加入1ml TRIzol,用勻漿儀進行勻漿處理。樣品體積不應超過TRIzol體積10℅。

b.單層培養細胞直接在培養板中加入TRIzol裂解細胞，每10cm2面積(即3.5cm直徑的培養板)加1ml，用移液器吸打幾次。TRIzol的用量應根據培養板面積而定，不取決于細胞數。TRIzol加量不足可能導致提取的RNA有DNA污染。

c．細胞懸液離心收集細胞，每5-10×106動物、植物、酵母細胞或1×107細菌細胞加入1ml TRIzol，反復吸打。加TRIzol之前不要洗滌細胞以免mRNA降解。一些酵母和細菌細胞需用勻漿儀處理。產品僅用于科研

2．將勻漿樣品在室溫（15-30℃）放置5分鐘，使核酸蛋白復合物完全分離。

3．可選步驟：如樣品中含有較多蛋白質，脂肪，多糖或胞外物質（肌肉，植物結節部分等）可于2-8℃10000×g離心10分鐘，取上清。離心得到的沉淀中包括細胞外膜，多糖，高分子量DNA，上清中含有RNA。處理脂肪組織時，上層有大量油脂應去除。取澄清的勻漿液進行下一步操作。

5. 每使用1ml TRIzol加入0.2ml，劇烈振蕩15秒，室溫放置3分鐘。

6. 2-8℃10000×g離心15分鐘。樣品分為三層：底層為黃色有機相，上層為無色水相和一個中間層。RNA主要在水相中，水相體積約為所用TRIzol試劑的60℅。

7. 把水相轉移到新管中，如要分離DNA和蛋白質可保留有機相，進一步操作見后。用異丙醇沉淀水相中的RNA。每使用1ml TRIzol加入0.5ml異丙醇，室溫放置10分鐘。

8. 2-8℃10000×g離心10分鐘，離心前看不出RNA沉淀，離心后在管側和管底出現膠狀沉淀。移去上清。

原創作者：上海莼試生物技術有限公司

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