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小量質粒快速提取試劑盒(1.5~4.5mL)

  • 產品貨號:CS-01F96534
  • 產品價格:電議
  • 產品產地:國產
  • 包裝類型:盒裝
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  • 含量:50次|100次|200次
  • 品牌名稱:莼試
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簡介內容:小量質粒快速提取試劑盒(1.5~4.5mL)現貨供應,價格實惠。

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小量質粒快速提取試劑盒(1.54.5mL)

Fast Plasmid Mini Kit(1.5-4.5 ml)

50|100|200

CS-01F96534

本試劑盒采用改進SDS-堿裂解法裂解細胞,離心吸附柱內的硅基質膜在高鹽、低pH值狀態下選擇性地結合溶液中的質粒DNA,再通過漂洗液將雜質和其它細菌成分去除,后低鹽、高pH值的洗脫緩沖液將純凈質粒DNA從硅基質膜上洗脫。

試劑盒特點:

離心吸附柱內硅基質膜全部采用進口世界著名公司特制吸附膜,柱與柱之間吸附量差異極小,可重復性好。克服了國產試劑盒膜質量不穩定的弊端。

快速、方便,不需要使用有毒的、氯仿等試劑,也不需要乙醇沉淀。獲得的質粒產量高、純度好,可以直接用于酶切、轉化、PCR、體外轉錄、測序等各種分子生物學實驗。

注意事項:

本試劑盒適用菌株為XL-1 BlueDH5α等核酸酶含量低缺陷型菌株。所用菌株為JM系列、HB101endA菌株或野生型菌株,核酸酶含量豐富,應購買本公司的高純度質粒小量快速提取試劑盒。

所有的離心步驟均在室溫完成,使用轉速可以達到13000rpm的傳統臺式離心機,如Eppendorf 5415C或者類似離心機。

溶液P3中含有刺激性化合物,操作時要戴乳膠手套,避免沾染皮膚、眼睛和衣服。若沾染皮膚、眼睛時,要用大量清水或者生理鹽水沖洗。

提取質粒的量與細菌培養濃度、質粒拷貝數等因素有關。一般高拷貝質粒,建議接種單菌落于1.54.5mL加合適抗生素的LB培養基,過夜培養1416個小時,可提取出多達20μg的純凈質粒。如果所提質粒為低拷貝質粒或大于10kb的大質粒,應適當加大菌體使用量,使用510mL過夜培養物,同時按比例增加P1P2P3的用量,其它步驟相同。

得到的質粒DNA可用瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計檢測濃度與純度。OD260值為1相當于大約50μg/ml DNA。電泳可能為單一條帶,也可能為2條或者多條DNA條帶,這主要是不同程度的螺旋構象質粒泳動位置不一造成,與提取物培養時間長短、提取時操作劇烈程度等有關。本公司產品正常操作情況下基本螺旋可以過90%

質粒DNA確切分子大小,必須酶切線性化后,對比DNA分子量Marker才可以知道。處于環狀或者螺旋狀態的的質粒,泳動位置不確定,無法通過電泳知道其確切大小。

洗脫液EB不含有螯合劑EDTA,不影響下游酶切、連接等反應。也可以使用水洗脫,但應該確保pH大于7.5pH過低影響洗脫效率。用水洗脫質粒應該保存在-20℃。質粒DNA如果需要長期保存,可以用TE緩沖液洗脫(10mM Tris-HCl1mM EDTApH8.0),但是EDTA可能影響下游酶切反應,使用時可以適當稀釋。

操作步驟:(實驗前請先閱讀注意事項)

提示:

次使用前請先在漂洗液WB中加入量無水乙醇,充分混勻,加入后請及時在方框打鉤標記已加入乙醇,以免多次加入!

RNase A全部加入溶液P1中,混勻,每次使用后置于28℃保存。

將溶液P3放在冰上預冷。

1.54.5mL過夜培養的菌液,9000rpm離心30秒,盡可能的倒干上清,收集菌體。

收集過1.5mL菌液,可以離心棄上清后,在同一個1.5mL管內加入更多的菌液,重復步驟1,直到收集到足夠的菌體。

250μL溶液P1重懸菌體沉淀,渦旋振蕩至徹底懸浮。

如果有未徹底混勻的菌塊,會影響裂解,導致提取量和純度偏低。

250μL的溶液P2,溫和地上下翻轉47次使菌體充分裂解,室溫放置4分鐘。

溫和地混合,不要劇烈震蕩,以免基因組DNA剪切斷裂!所用時間不應過5分鐘!以免質粒受到破壞。此時菌液應變得清亮粘稠,如果菌體少,很快清亮粘稠后就可以做下一步,不是一定要準確的5分鐘。

350μL溶液P3,立即溫和地上下翻轉47次,充分混勻時會出現白色絮狀沉淀。

冰上靜置35分鐘,13000rpm離心10分鐘,小心取上清。

加入溶液P3后應該立即混勻,以免產生SDS的局部沉淀。如果上清中還有微小白色沉淀,可再次離心后取上清。

將上一步所得上清加入吸附柱AC中(吸附柱放入收集管中),13000rpm離心3060秒,倒掉收集管中的廢液。

加入500μL漂洗液WB(請先檢查是否已加入無水乙醇!),12000rpm離心30秒,棄掉廢液。

加入500μL漂洗液WB12000rpm離心30秒,棄掉廢液。

將吸附柱AC放回空收集管中,13000rpm離心2分鐘,盡量除去漂洗液,以免漂洗液中殘留乙醇抑制下游反應。

取出吸附柱AC,放入一個干凈的離心管中,在吸附膜的中間部位加50μL洗脫緩沖液EB(洗脫緩沖液事先在6570℃水浴中加熱效果更好),室溫放置2分鐘,12000rpm離心1分鐘。如果需要較多量質粒,可將得到的溶液重新加入離心吸附柱中,離心1分鐘。

 

洗脫體積越大,洗脫效率越高。如果需要質粒濃度較高,可以適當減少洗脫體積,但是小體積不應少于30μL,體積過小降低質粒洗脫效率,減少質粒產量。

實驗步驟:
(1)實驗開始前將RNA提取液于65℃水浴鍋中預熱,離心管中加入ME(巰基乙醇),(10mL加80ul,50mL中加入300ul)
(2)取約0.8g菌絲體(液體培養獲得的菌絲用真空抽濾即可!固體培養就更好說了),在液氮中迅速磨成精細粉末,裝入50mL離心管,按1g材料8mL的量加入預熱的RNA提取液,顛倒混勻  
(3)65℃水浴3-10 min,期間混勻2-3次
(4)加入等體積的酚(注意是酸酚pH4.5)::異戊醇(25:24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)
(5)取上清,等體積的:異戊醇(24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)
(6)加入1/4V體積10M LiCl溶液,4℃放置6h以上(或過夜)
(7)10,000rpm,4℃離心20min
(8)棄上清,用500ul SSTE溶解沉淀
(9)酚::異戊醇(25:24:1)抽提兩次,:異戊醇(24:1)抽提1次(10,000rpm,4℃,5min)
(10)加2V體積的無水乙醇,在-70℃冰箱沉淀30min以上
(11)12,000rpm,4℃離心20 min
(12)棄上清.沉淀用70%酒精漂洗一次,干燥
(13)加200ul的DEPC處理水溶解
(14)用非變性瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計掃描檢測RNA的質量
(在抽提過程中,若蛋白質含量或其它的雜質還較多,可以增加抽提次數)
操作步驟:
1. 勻漿處理:a.組織 將組織在液氮中磨碎,每50-100mg組織加入1ml TRIzol,用勻漿儀進行勻漿處理。樣品體積不應超過TRIzol體積10℅。
b.單層培養細胞 直接在培養板中加入TRIzol裂解細胞,每10cm2面積(即3.5cm直徑的培養板)加1ml,用移液器吸打幾次。TRIzol的用量應根據培養板面積而定,不取決于細胞數。TRIzol加量不足可能導致提取的RNA有DNA污染。
c.細胞懸液 離心收集細胞,每5-10×106動物、植物、酵母細胞或1×107細菌細胞加入1ml TRIzol,反復吸打。加TRIzol之前不要洗滌細胞以免mRNA降解。一些酵母和細菌細胞需用勻漿儀處理。產品僅用于科研
2.將勻漿樣品在室溫(15-30℃)放置5分鐘,使核酸蛋白復合物完全分離。
3.可選步驟:如樣品中含有較多蛋白質,脂肪,多糖或胞外物質(肌肉,植物結節部分等)可于2-8℃10000×g離心10分鐘,取上清。離心得到的沉淀中包括細胞外膜,多糖,高分子量DNA,上清中含有RNA。處理脂肪組織時,上層有大量油脂應去除。取澄清的勻漿液進行下一步操作。
5. 每使用1ml TRIzol加入0.2ml,劇烈振蕩15秒,室溫放置3分鐘。
6. 2-8℃10000×g離心15分鐘。樣品分為三層:底層為黃色有機相,上層為無色水相和一個中間層。RNA主要在水相中,水相體積約為所用TRIzol試劑的60℅。
7. 把水相轉移到新管中,如要分離DNA和蛋白質可保留有機相,進一步操作見后。用異丙醇沉淀水相中的RNA。每使用1ml TRIzol加入0.5ml異丙醇,室溫放置10分鐘。
8. 2-8℃10000×g離心10分鐘,離心前看不出RNA沉淀,離心后在管側和管底出現膠狀沉淀。移去上清。

原創作者:上海莼試生物技術有限公司

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