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柱式質粒DNA大提試劑盒(100~300mL)

  • 產品貨號:CS-01F96506
  • 產品價格:電議
  • 產品產地:國產
  • 包裝類型:盒裝
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  • 含量:5次
  • 品牌名稱:莼試
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簡介內容:柱式質粒DNA大提試劑盒(100~300mL)現貨供應,價格實惠。

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標簽:柱式質粒DNA大提試劑盒(100~300mL) 5次 

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柱式質粒DNA大提試劑盒(100300mL)

Column Max Plasmid DNA Extraction Kit(100-300mL)

5

CS-01F96506

本試劑盒是用于質粒DNA大量制備與純化的試劑盒。菌體先經堿裂解法處理,再通過離心吸附柱,專一結合DNA,后洗去雜質,高效快速提取質粒DNA,全套操作可以在30分鐘之內完成。使用本試劑盒純化得到的高純度質粒DNA,可以直接用于酶切、轉化、測序及PCR等。

試劑盒特點:

快速、步驟少,整個操作在半個小時之內完成。

純度高,采用本試劑盒提取的質粒OD比值在1.82.0之間。

產量高,每毫升過夜培養(yǎng)的細菌可以提取到25μg/mL

用途廣,適用于低拷貝和高拷貝質粒。

注意事項:

細菌培養(yǎng)時間一般為1216小時,但接種量大時應減少時間。過度培養(yǎng)會降低質粒的質量甚至導致質粒DNA突變。

溶液A:溶液B:溶液C的比例為3:3:4。若細菌量增大,需按此比例放大這些溶液的使用量。

隨菌體增多應延長溶液B的作用時間,直至溶液成粘稠透明狀。但時間過長會導致質粒DNA變性。

加溶液C后形成的白色沉淀中有變性的蛋白質、細菌基因組DNA和細胞碎片,離心后應避免帶入到后續(xù)處理中。

通用洗柱液洗滌離心柱后必須甩干一次,否則殘留通用洗柱液中的乙醇會干擾后續(xù)實驗。

質粒的具體產量跟細菌量、質??截悢?、質粒大小和操作規(guī)范程度密切相關。100mL高拷貝的菌液一般能得到7001500μg質粒DNA100mL低拷貝的菌液一般能得到150350μg質粒DNA。

純化的質粒在電泳中表現為23條帶有時甚至為46條帶均屬正常,未分開的環(huán)套質粒,易被誤判為基因組DNA。

使用方法:

250mL離心管收集100300mL菌液,5000rpm離心10分鐘,去除上清。

往細菌沉淀中加入5mL溶液A,充分振蕩懸浮(次使用時需要將RNase A溶液全部加入到溶液A中并混合均勻,未用完的、含RNase A的溶液A需放4℃保存)。

注意:充分重懸細胞沉淀使之無細胞結塊狀物對于獲得高的質粒產量十分重要。

加入5mL溶液B,溫和翻轉10余次至藍色變得均勻。室溫放置510分鐘裂解細菌。

注意:避免劇烈振蕩,否則細菌基因組DNA將斷裂為小片段,與質粒難以分離,污染質粒DNA。溶液B用后需要將蓋擰緊存放,否則空氣中的二氧化碳會進入溶液,形成碳酸,中和溶液B中的堿,降低其效率。如果溶液B顏色不是藍色,則表示變質,應該棄之不用并且速跟廠家聯系。

加入冰浴的7mL溶液C,顛倒混勻,此時混合液應該從藍色變成無色,如果不發(fā)生顏色變化,則表示溶液C變質,需要聯系廠家。將混合液冰上放置10分鐘,將有白色絮狀物形成。注意不要過分振蕩。

6000rpm離心10分鐘。如果離心管承受能力,離心速度還可以適當提高以充分沉淀絮狀物。

將上清液(約20mL)轉移到離心吸附柱中,放入50mL套管中。由于此時的溶液比重較大,部分沉淀物懸浮在上清液中屬正常,吸取上清時避開漂浮的沉淀物即可。

6000rpm離心5分鐘,質粒DNA將與離心吸附柱中的膜結合。棄穿透液。

10mL通用洗柱液加入到離心吸附柱中,室溫靜置2分鐘后6000rpm離心5分鐘,棄穿透液。

重復上步一次,即將10mL通用洗柱液加入到離心吸附柱中,室溫靜置2分鐘后6000rpm離心5分鐘,棄穿透液。

室溫6000rpm空甩5分鐘,棄穿透液。注意:此步對去除殘留通用洗柱液很重要,否則通用洗柱液會影響DNA的使用。

將離心吸附柱放入一個自備的、干凈的50mL塑料離心管中,加0.5mL DNA洗脫液2.0(洗脫液如加熱到5065℃效果更佳),室溫靜置2分鐘后6000rpm離心5分鐘,收集液即是質粒DNA溶液。

 

本試劑盒中的離心吸附柱吸附能力較,所以再用1mL DNA洗脫液2.0洗脫34次才能把絕大部分質粒DNA洗脫下來。得到的RNA可以收集在一起立即使用或存放于-80℃待用。

實驗步驟:
(1)實驗開始前將RNA提取液于65℃水浴鍋中預熱,離心管中加入ME(巰基乙醇),(10mL加80ul,50mL中加入300ul)
(2)取約0.8g菌絲體(液體培養(yǎng)獲得的菌絲用真空抽濾即可!固體培養(yǎng)就更好說了),在液氮中迅速磨成精細粉末,裝入50mL離心管,按1g材料8mL的量加入預熱的RNA提取液,顛倒混勻  
(3)65℃水浴3-10 min,期間混勻2-3次
(4)加入等體積的酚(注意是酸酚pH4.5)::異戊醇(25:24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)
(5)取上清,等體積的:異戊醇(24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)
(6)加入1/4V體積10M LiCl溶液,4℃放置6h以上(或過夜)
(7)10,000rpm,4℃離心20min
(8)棄上清,用500ul SSTE溶解沉淀
(9)酚::異戊醇(25:24:1)抽提兩次,:異戊醇(24:1)抽提1次(10,000rpm,4℃,5min)
(10)加2V體積的無水乙醇,在-70℃冰箱沉淀30min以上
(11)12,000rpm,4℃離心20 min
(12)棄上清.沉淀用70%酒精漂洗一次,干燥
(13)加200ul的DEPC處理水溶解
(14)用非變性瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計掃描檢測RNA的質量
(在抽提過程中,若蛋白質含量或其它的雜質還較多,可以增加抽提次數)
操作步驟:
1. 勻漿處理:a.組織 將組織在液氮中磨碎,每50-100mg組織加入1ml TRIzol,用勻漿儀進行勻漿處理。樣品體積不應超過TRIzol體積10℅。
b.單層培養(yǎng)細胞 直接在培養(yǎng)板中加入TRIzol裂解細胞,每10cm2面積(即3.5cm直徑的培養(yǎng)板)加1ml,用移液器吸打幾次。TRIzol的用量應根據培養(yǎng)板面積而定,不取決于細胞數。TRIzol加量不足可能導致提取的RNA有DNA污染。
c.細胞懸液 離心收集細胞,每5-10×106動物、植物、酵母細胞或1×107細菌細胞加入1ml TRIzol,反復吸打。加TRIzol之前不要洗滌細胞以免mRNA降解。一些酵母和細菌細胞需用勻漿儀處理。產品僅用于科研
2.將勻漿樣品在室溫(15-30℃)放置5分鐘,使核酸蛋白復合物完全分離。
3.可選步驟:如樣品中含有較多蛋白質,脂肪,多糖或胞外物質(肌肉,植物結節(jié)部分等)可于2-8℃10000×g離心10分鐘,取上清。離心得到的沉淀中包括細胞外膜,多糖,高分子量DNA,上清中含有RNA。處理脂肪組織時,上層有大量油脂應去除。取澄清的勻漿液進行下一步操作。
5. 每使用1ml TRIzol加入0.2ml,劇烈振蕩15秒,室溫放置3分鐘。
6. 2-8℃10000×g離心15分鐘。樣品分為三層:底層為黃色有機相,上層為無色水相和一個中間層。RNA主要在水相中,水相體積約為所用TRIzol試劑的60℅。
7. 把水相轉移到新管中,如要分離DNA和蛋白質可保留有機相,進一步操作見后。用異丙醇沉淀水相中的RNA。每使用1ml TRIzol加入0.5ml異丙醇,室溫放置10分鐘。
8. 2-8℃10000×g離心10分鐘,離心前看不出RNA沉淀,離心后在管側和管底出現膠狀沉淀。移去上清。

原創(chuàng)作者:上海莼試生物技術有限公司

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