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本試劑盒適用于從福爾馬林固定、石蠟包埋的組織中有效純化總RNA。適合從小于30mg的石蠟包埋組織或切片中抽提高純度的總RNA，本試劑盒無需使用酚/氯仿抽提和異丙醇沉淀，一小時內即可完成多個樣品的抽提。本品使用專門優化的裂解液和蛋白酶K，釋放福爾馬林固定或組織切片樣本中的RNA，無需過夜操作；消化后的樣品在較高的溫度孵育后，去除由福爾馬林交聯造成的抑制作用，有效釋放組織切片中的RNA，而避免危害RNA的完整性；優化的緩沖系統使裂解液中的RNA可特異結合到硅膠吸附膜上，而其他污染物可流過膜；可通過漂洗步驟有效去除，經過洗脫的RNA可直接用于RT-PCR、Real-Time PCR和印跡分析等實驗。

保存：室溫（15～30℃），其中10×反應緩沖液、DNase I需-20℃保存。

自備試劑：

無水乙醇（新開封或提取RNA專用）、10mM PBS(PH7.4)。

實驗準備：

向蛋白酶K中加入0.625mL蛋白酶K儲存液使其溶解，-20℃保存。配制好的蛋白酶K溶液勿長時間室溫放置，避免反復凍融，以免影響其活性。

預防RNase污染，應注意以下幾方面：

使用無RNase的塑料制品和槍頭，避免交叉污染。

玻璃器皿應在使用前于180℃高溫下干烤4小時，塑料器皿可在0.5M NaOH中浸泡10分鐘，用水徹底沖洗后高壓滅菌。

配制溶液應使用RNase-Free Water。

操作人員戴一次性口罩和手套，實驗過程中要勤換手套。

獲得樣品后，要盡快將樣品在4%～10%的福爾馬林中固定，固定時間以14～24小時為宜，時間過長易導致RNA斷裂，影響下游實驗。

確保包埋前的樣品徹底脫水，殘留的福爾馬林會抑制蛋白酶K的作用。

次使用前應按試劑瓶標簽說明先在緩沖液RW2中加入無水乙醇。

使用前請檢查緩沖液GTL、緩沖液GL和緩沖液DS是否出現結晶或者沉淀，如有結晶或者沉淀，請將緩沖液GTL、緩沖液GL和緩沖液DS于56℃水浴重新溶解。

實驗步驟：

(1)實驗開始前將RNA提取液于65℃水浴鍋中預熱,離心管中加入ME(巰基乙醇),(10mL加80ul,50mL中加入300ul)

(2)取約0.8g菌絲體(液體培養獲得的菌絲用真空抽濾即可！固體培養就更好說了),在液氮中迅速磨成精細粉末,裝入50mL離心管,按1g材料8mL的量加入預熱的RNA提取液,顛倒混勻

(3)65℃水浴3-10 min,期間混勻2-3次

(4)加入等體積的酚(注意是酸酚pH4.5)::異戊醇(25:24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)

(5)取上清,等體積的:異戊醇(24:1)抽提(10,000rpm,4℃,5 min)

(6)加入1/4V體積10M LiCl溶液,4℃放置6h以上(或過夜)

(7)10,000rpm,4℃離心20min

(8)棄上清,用500ul SSTE溶解沉淀

(9)酚::異戊醇(25:24:1)抽提兩次,:異戊醇(24:1)抽提1次(10,000rpm,4℃,5min)

(10)加2V體積的無水乙醇,在-70℃冰箱沉淀30min以上

(11)12,000rpm,4℃離心20 min

(12)棄上清.沉淀用70%酒精漂洗一次,干燥

(13)加200ul的DEPC處理水溶解

(14)用非變性瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計掃描檢測RNA的質量

(在抽提過程中,若蛋白質含量或其它的雜質還較多,可以增加抽提次數)

操作步驟:

1. 勻漿處理:a.組織將組織在液氮中磨碎,每50-100mg組織加入1ml TRIzol,用勻漿儀進行勻漿處理。樣品體積不應超過TRIzol體積10℅。

b.單層培養細胞直接在培養板中加入TRIzol裂解細胞，每10cm2面積(即3.5cm直徑的培養板)加1ml，用移液器吸打幾次。TRIzol的用量應根據培養板面積而定，不取決于細胞數。TRIzol加量不足可能導致提取的RNA有DNA污染。

c．細胞懸液離心收集細胞，每5-10×106動物、植物、酵母細胞或1×107細菌細胞加入1ml TRIzol，反復吸打。加TRIzol之前不要洗滌細胞以免mRNA降解。一些酵母和細菌細胞需用勻漿儀處理。

2．將勻漿樣品在室溫（15-30℃）放置5分鐘，使核酸蛋白復合物完全分離。

3．可選步驟：如樣品中含有較多蛋白質，脂肪，多糖或胞外物質（肌肉，植物結節部分等）可于2-8℃10000×g離心10分鐘，取上清。離心得到的沉淀中包括細胞外膜，多糖，高分子量DNA，上清中含有RNA。處理脂肪組織時，上層有大量油脂應去除。取澄清的勻漿液進行下一步操作。

5. 每使用1ml TRIzol加入0.2ml，劇烈振蕩15秒，室溫放置3分鐘。

6. 2-8℃10000×g離心15分鐘。樣品分為三層：底層為黃色有機相，上層為無色水相和一個中間層。RNA主要在水相中，水相體積約為所用TRIzol試劑的60℅。

7. 把水相轉移到新管中，如要分離DNA和蛋白質可保留有機相，進一步操作見后。用異丙醇沉淀水相中的RNA。每使用1ml TRIzol加入0.5ml異丙醇，室溫放置10分鐘。

8. 2-8℃10000×g離心10分鐘，離心前看不出RNA沉淀，離心后在管側和管底出現膠狀沉淀。移去上清。

原創作者：上海莼試生物技術有限公司

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