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產品名稱 | 檢測方法 | 規格 | 貨號 |
輔酶ⅠNAD(H)含量試劑盒 | 微量法 | 100管/48樣 | CS-01S63725 |
注意:正式測定前務必取2-3個預期差異較大的樣本做預測定
輔酶ⅠNAD(H)廣泛存在于動物、植物、微生物和培養細胞中,NAD+是糖酵解(EMP)和三羧酸循環(TCA)的主要氫受體,生成的NADH經呼吸電子鏈(ETC)傳遞把電子交給氧,在合成ATP的同時,形成大量的ROS,同時NADH再生為NAD+。糖、脂、蛋白質三大代謝物質分解中的氧化反應絕大部分通過這一體系完成。NAD(H)含量和NADH/NAD+比值的高低可用于評價糖酵解和TCA循環的強弱。較高的NAD(H)及NADH/NAD+比值說明細胞呼吸耗氧量較高,處于過氧化狀態。此外,NADH/NAD+比值升高也可
測定原理
分別用酸性和堿性提取液提取樣品中NAD+和NADH,NADH通過PMS的遞氫作用,還原氧化型噻唑藍(MTT)為甲瓚,在570nm下檢測吸光值;而NAD+可被乙醇脫氫酶還原為NADH,進一步采用MTT還原法檢測。
需自備的儀器和用品
酶標儀、臺式離心機、移液器、96孔板、研缽、冰和蒸餾水。
試劑的組成和配制
酸性提取液:液體50mL×1瓶,4℃保存;
堿性提取液:液體50mL×1瓶,4℃保存;
試劑一:液體10 mL×1瓶,4℃保存;
試劑二:液體3 mL×1瓶,4℃保存;
試劑三:粉劑×1瓶,-20 ℃保存,用時加入3mL蒸餾水,混勻,用不完的試劑4℃保存一周;
試劑四:粉劑×1瓶,4 ℃保存,用時加入3mL蒸餾水,混勻,用不完的試劑4℃保存一周;
試劑五:液體3.6mL×1瓶,4 ℃保存;
試劑六:液體30mL×1瓶,4 ℃保存;
試劑七:液體50mL×1瓶,4 ℃保存。
NAD+和NADH的提取
1 血清(漿)中NAD+和NADH的提取
NAD+的提取:按照血清(漿)體積(mL):酸性提取液體積(mL)為1:5~10的比例(建議取約0.1mL血清(漿),加入1mL酸性提取液),95℃水浴5min(蓋緊,以防止水分散失);冰浴中冷卻后,10000g 4 ℃離心10min;取500μL上清液,加入500μL堿性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心10min,取上清,置冰上待測。
NADH的提取:按照血清(漿)體積(mL):堿性提取液體積(mL)為1:5~10的比例(建議取約0.1mL血清(漿),加入1mL堿性提取液),95℃水浴5min(蓋緊,以防止水分散失);冰浴中冷卻后,10000g 4 ℃離心10min;取500μL上清液,加入500μL酸性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心10min,取上清,置冰上待測。
2組織中NAD+和NADH的提取:
NAD+的提取:按照組織質量(g):酸性提取液體積(mL)為1:5~10的比例(建議取約0.1g組織,加入1mL酸性提取液),冰浴研磨,95℃水浴5min(蓋緊,以防止水分散失);冰浴中冷卻后,10000g 4 ℃離心10min;取500μL上清液,加入500μL堿性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心10min,取上清,置冰上待測。
NADH的提取:按照組織質量(g):堿性提取液體積(mL)為1:5~10的比例(建議取約0.1g組織,加入1mL堿性提取液),冰浴研磨,95℃水浴5min(蓋緊,以防止水分散失);冰浴中冷卻后,10000g 4 ℃離心10min;取500μL上清液,加入500μL酸性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心10min,取上清,置冰上待測。
3 細胞或細菌中NAD+和NADH的提取:
NAD+的提取:先收集細胞或細菌到離心管內,棄上清,按照細菌或細胞數量(104個):酸性提取液體積(mL)為500~1000:1的比例(建議500萬細菌或細胞加入1mL酸性提取液),超聲波破碎(冰浴,功率20%或200W,超聲3s,間隔10s,重復30次),95℃水浴5min(蓋緊,以防止水分散失);冰浴中冷卻后,10000g?4?℃離心10min;取500μL上清液,加入500μL堿性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心10min,取上清,置冰上待測。
NADH的提取:先收集細胞或細菌到離心管內,棄上清,按照細菌或細胞數量(104個):堿性提取液體積(mL)為500~1000:1的比例(建議500萬細菌或細胞加入1mL堿性提取液),超聲波破碎(冰浴,功率20%或200W,超聲3s,間隔10s,重復30次),95℃水浴5min(蓋緊,以防止水分散失);冰浴中冷卻后,10000g?4?℃離心10min;取500μL上清液,加入500μL酸性提取液使之中和,混勻,10000g 4 ℃離心10min,取上清,置冰上待測。
測定步驟:
1、分光光度計或酶標儀預熱30min以上,調節波長至570nm,蒸餾水調零。
2、加樣表(在1.5mL棕色EP管中按下表依次加樣):
注意事項
1、如果一次性測定樣本數較多,可將試劑一、二、三和四按比例配成混合液。
2、對照管和測定管的測定步驟的區別:對照管加完試劑一、二、三、四和五后必須馬上加試劑六;測定管加完試劑一、二、三、四和五后必須反應20min后再加試劑六。
3、反應過程中注意避光。
4、若NAD+測定中△A(A2-A1)≤0.0302,NADH測定中△A(A2-A1)≤0.0222,說明樣本中輔酶含量較低,已低于檢測限,可做如下調整:(1)將測定管避光靜置時間20min延長到60min;(2)在提取階段增加取樣量,即取0.2g樣本或0.2mL樣本加入1mL提取液。
5、由于每一個測定管需要設一個對照管,本試劑盒100管保證測48個NAD+或NADH.
NAD+和NADH含量的計算
(一)NAD+含量的計算
標準條件下的回歸曲線為y = 0.1475x + 0.0302,R2 = 0.9978;其中y為△A,x為NAD+濃度nmol/mL
1、血清(漿)中NAD+含量計算
NAD+含量(nmol/mL)=[(△A -0.0302)÷0.1475×V1) ]÷(V3×V1÷V2)=135.6×(△A -0.0302)
2、組織、細菌或細胞中NAD+含量計算
(1)按樣本蛋白濃度計算
NAD+ (nmol/mg prot)=[(△A -0.0302)÷0.1475×V1)]÷(V1×Cpr)= 6.8×(△A -0.0302)÷Cpr
(2)按樣本鮮重計算
NAD+ (nmol/g 鮮重)= [(△A -0.0302)÷0.1475×V1)]÷(W×V1÷V2)= 13.6×(△A -0.0302)÷W
(3)按細菌或細胞密度計算
NAD+ (nmol/104 cell)=[(△A -0.0302)÷0.1475×V1)]÷(500×V1÷V2)=0.027×(△A -0.0302)
(二)NADH含量的計算
標準條件下的回歸曲線為y = 0.1404x + 0.0222,R2 = 0.9976;其中y為△A,x為NADH濃度nmol/mL
1、血清(漿)中NADH含量計算
NADH含量(nmol/mL)= [ (△A -0.0222)÷0.1404×V1) ]÷(V3×V1÷V2)= 142.5×(△A -0.0222)
2、組織、細菌或細胞中NADH含量計算
(1)按樣本蛋白濃度計算
NADH (nmol/mg prot)= [ (△A -0.0222)÷0.1404×V1) ]÷(V1×Cpr)= 7.1×(△A -0.0222)÷Cpr
(2)按樣本鮮重計算
NADH (nmol/g 鮮重)=[(△A -0.0222)÷0.1404×V1) ]÷(W×V1÷V2)= 14.2×(△A -0.0222)÷W
(3)按細菌或細胞密度計算
NADH (nmol/104 cell)= [ (△A -0.0222)÷0.1404×V1) ]÷(500×V1÷V2)=0.028×(△A -0.0222)
V1:加入反應體系中樣本體積,0.02mL;V2:加入提取液體積,2mL;V3:加入血清(漿)體積:0.1mL;Cpr:樣本蛋白質濃度,mg/mL; W:樣本質量,g;500:細胞或細菌總數,500萬。
注意:最低檢測限為0.1nmol/mL或0.1nmol/g鮮重 或0.001nmol/mg prot
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原創作者:上海莼試生物技術有限公司
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