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產品名稱 | 檢測方法 | 規格 | 貨號 |
α-酮戊二酸脫氫酶(α-KGDH)活性測定試劑盒 | 分光光度法 | 50管/48樣 | CS-01S63289 |
α-KGDH(EC
測定原理
α-KGDH催化α-酮戊二酸、NAD+ 和輔酶A生成琥珀酰輔酶A、 二氧化碳和 NADH,NADH在340 nm有特征吸收峰,以NADH的生成速率表示α-KGDH活性。
需自備的儀器和用品
紫外分光光度計、水浴鍋、臺式離心機、可調式移液器、1mL石英比色皿、研缽、冰和蒸餾水。
試劑的組成和配制
試劑一:50mL×1瓶,-20℃保存;
試劑二:10mL×1瓶,-20℃保存;
試劑三:1mL×1支,-20℃保存;
試劑四:液體55.5mL×1瓶,4℃保存;
試劑五:粉劑×1支,4℃保存;
試劑六:粉劑×1支,4℃保存;
試劑七:粉劑×1支,4℃保存;
試劑八:粉劑×1支,4℃保存;
試劑九:粉劑×1支,-20℃保存;
試劑十:粉劑×1支,-20℃保存;臨用前加入2.1mL蒸餾水充分混勻待用;用不完的試劑分裝后-20℃保存,禁止反復凍融。
工作液的配制:臨用前把試劑五、試劑六、試劑七、試劑八和試劑九轉移到試劑四中混合溶解待用;用不完的試劑分裝后-20℃保存,禁止反復凍融。
樣本的前處理:
組織、細菌或細胞中胞漿蛋白與線粒體蛋白的分離:
1、稱取約0.1g組織或收集500萬細菌或細胞,加入1mL試劑一和10uL 試劑三,用冰浴勻漿器或研缽勻漿。
2、將勻漿600g,4℃離心5min。
3、棄沉淀,將上清液移至另一離心管中,11000g,4℃離心10min。
4、上清液即胞漿提取物,可用于測定從線粒體泄漏的α-KGDH(此步可選做)。
5、在步驟④的沉淀中加入200uL試劑二和2uL 試劑三,超聲波破碎(冰浴,功率20%或200W,超聲3秒,間隔10秒,重復30次),用于線粒體α-KGDH活性測定。
測定步驟
1、分光光度計預熱30min以上,調節波長至340nm處,蒸餾水調零。
2、工作液于37℃(哺乳動物)或25℃(其它物種)孵育5min。
3、在1mL石英比色皿中依次加入40μL試劑十、60μL樣本和1.1mL工作液,混勻,立即記錄340nm處20s的吸光值A1和2min20s時的吸光值A2,計算ΔA=A2-A1。
α-KGDH活性計算
(1) 按樣本蛋白濃度計算
單位的定義:每mg組織蛋白每分鐘生成1 nmol的NADH定義為一個酶活力單位。
α-KGDH活性(nmol/min/mg prot)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷(V樣×Cpr) ÷T=1608×ΔA÷Cpr
(2) 按樣本鮮重計算:
單位的定義:每g組織在反應體系中每分鐘生成1 nmol的NADH定義為一個酶活力單位。
α-KGDH(nmol/min /g 鮮重)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷(W× V樣÷V樣總) ÷T=325×ΔA÷W
(3) 按細菌或細胞密度計算:
單位的定義:每1萬個細菌或細胞每分鐘生成1 nmol的NADH定義為一個酶活力單位。
α-KGDH活性(nmol/min/104 cell)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷(500×V樣÷V樣總) ÷T=0.65×ΔA
V反總:反應體系總體積,1.2×10-3 L;ε:NADH摩爾消光系數,6.22×103 L / mol /cm;d:比色皿光徑,1cm;V樣:加入樣本體積,0.06 mL;V樣總:加入提取液體積,0.202 mL;T:反應時間,2min;Cpr:樣本蛋白質濃度,mg/mL;W:樣本質量,g;500:細菌或細胞總數,500萬。
原創作者:上海莼試生物技術有限公司
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