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TH位于線粒體的內膜上，又稱為呼吸電子傳遞鏈復合體六，催化NADH+NADP+和 NAD++NADPH相互轉化。催化正向反應稱為TH-1。線粒體NADH含量增加時會導致線粒體膜的H+電化學梯度升高，因而促進了電子傳遞鏈上ROS的產生。TH-1促進NADH轉換為NADPH，從而提高線粒體的抗氧化能力。

商品介紹：

測定原理

NADH和NADPH均在340nm有特征吸收，因此TH催化的轉氫反應不能導致340nm吸光度發生變化。用人工合成底物3-乙酰吡啶腺嘌呤二核苷酸磷酸（APADP+）替代NADP+，TH-1催化 APADP+還原生成的APADPH在375nm有特征光吸收，因此通過測定375nm光吸收增加速率，來計算TH-1活性。

需自備的儀器和用品

可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調式移液器、1mL玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

試劑的組成和配制

試劑一：液體50mL×1瓶，-20℃保存；

試劑二：液體25mL×1瓶，-20℃保存；

試劑三：液體25mL×2瓶，4℃保存；

試劑四：粉劑×2支，-20℃保存；

試劑五：粉劑×2支，-20℃保存；

樣本的前處理：

組織、細菌或細胞中胞漿蛋白與線粒體蛋白的分離：

①準確稱取0.1g組織或收集500萬細菌或細胞，加入1mL試劑一，用冰浴勻漿器或研缽勻漿。

②將勻漿600g，4℃離心5min。

③棄沉淀，將上清液移至另一離心管中，11000g，4℃離心10min。

④上清液即為除去線粒體的胞漿蛋白，可用于測定從線粒體泄漏的TH-1（此步可選做）。

⑤步驟④中的沉淀即為線粒體，加入500uL試劑二，超聲波破碎（冰浴，功率20％或200W，超聲3s，間隔10秒，重復30次），用于TH-1活性測定。

測定步驟：

1、分光光度計預熱30min以上，調節波長至375nm，蒸餾水調零。

2、樣本測定

（1）工作液的配制：臨用前取試劑三、試劑四和試劑五各一支，將試劑四、五轉移到試劑三中混合溶解，置于37℃（哺乳動物）或25℃（其它物種）水浴5min；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融。

（2）在1mL玻璃比色皿中加入100μL樣本和1000μL工作液，混勻，立即記錄375nm處初始吸光值A1和 10min后的吸光值A2，計算ΔA=A2-A1。

TH-1活性計算

（1）按樣本蛋白濃度計算

單位的定義：每mg組織蛋白每分鐘產生1 nmol APADPH定義為一個酶活性單位。

TH-1活性（nmol/min /mg prot）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(Cpr×V樣)÷T=164×ΔA÷Cpr

（2）按樣本鮮重計算

單位的定義：每g組織每分鐘產生1 nmol APADPH定義為一個酶活性單位。

TH-1活性（nmol/min/g 鮮重）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(V樣÷V樣總×W) ÷T=82×ΔA÷W

（3）按細菌或細胞密度計算

單位的定義：每1萬個細菌或細胞每分鐘產生1 nmol APADPH定義為一個酶活性單位。

TH-1活性（nmol/min/104 cell）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(V樣÷V樣總×500) ÷T=0.164×ΔA

V反總：反應體系總體積，1.1×10-3 L；ε：APADPH摩爾消光系數，6.7×103 L / mol /cm；d：比色皿光徑，1cm；V樣：加入樣本體積，0.1 mL；V樣總：加入提取液體積，0.5mL；T：反應時間，10 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g；500：細菌或細胞總數，500萬。

注意：

1. 本產品僅供科研使用。請勿用于醫藥、臨床診斷或治療，食品及化妝品等用途。請勿存放于普通住宅區。
2. 為了您的安全和健康，請穿好實驗服并佩戴一次性手套和口罩操作。

原創作者：上海莼試生物技術有限公司

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