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2、平衡：結合緩沖液（Binding Buffer）為20mmol/LTris-HCl緩沖液，pH7.4，其中含1mM MnCl2，1mM CaCl2，0.15M NaCl。由于介質保存液含有20%乙醇，因此裝好柱的介質必須進行平衡。平衡介質所需的液體約為10個柱床體積。由于凝集素和糖基結合強度弱，為促進糖基結合，清洗緩沖液中可以不含有0.15M NaCl。

3、吸附：預分離組分經過結合緩沖液透析后進行上柱吸附。

4、清洗：待預分離組分已經都進入介質中后，加入清洗液體，洗去非特異吸附蛋白，大約5-10倍柱體積。

5、洗脫：可以用0.1-0.5M糖類進行線性或梯度洗脫，例如用α-甲基-D-甘露糖苷(α-D-methylmannoside)，或α-甲基-D-葡萄糖苷(α-D-methylglucoside)，緩沖液為20mmol/L Tris-HCl緩沖液，pH7.4，并含有0.15M NaCl。強結合組分可以采用低PH值（但不得低于pH3）緩沖液 ,即用0.1M,pH6.5的硼酸緩沖液進行洗脫。

親和介質再生：

ConA 瓊脂糖凝膠的再生處理方法：每次采用2-3倍體積、含0.5M/L NaCL、高pH（8.5）值和低pH（4.5）緩沖液交替清洗柱子，交替3次。再用3-5倍體積的清洗緩沖液清洗。高PH值緩沖液可以采用0.1MTris-HCL,低PH值緩沖液可以采用0.1M檸檬酸緩沖液。洗脫強力結合的組分，可以采用20-50%乙醇線性洗脫

性狀(以下信息僅供參考)：含20%乙醇，底部為乳白色膠體

用途：本品僅供科研，不得用于其它用途。(以下用途僅供參考)Con A 瓊脂糖凝膠用于各種含甘露醇及葡萄糖殘基的糖、糖蛋白、糖脂等物質的分離純化

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原創作者：上海莼試生物技術有限公司

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